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小鼠骨髓瘤細(xì)胞(NS-1)

 小鼠骨髓瘤細(xì)胞NS-1

細(xì)胞介紹

這是 P3X63Ag8(ATCCTIB-9)的一個(gè)不分泌克隆。Kappa 鏈合成了但不分泌。能

0.1mM8-氮雜鳥嘌呤但不能在 HAT 培養(yǎng)基中生長。據(jù)報(bào)道它是由于缺失了 3-

酮類固醇還原酶活性的膽固醇營養(yǎng)缺陷型。檢測表明肢骨發(fā)育畸形病毒(鼠痘)

性。

細(xì)胞特性

1 來源:小鼠骨髓瘤

2 形態(tài):淋巴母細(xì)胞

3 含量:>1x106

4 污染:支原體、細(xì)菌、酵母和真菌檢測為陰性

5 規(guī)格:T25 瓶或者 1mL 凍存管包裝

運(yùn)輸和保存:可選擇干冰運(yùn)輸及發(fā)送復(fù)蘇存活細(xì)胞方式:(1)干冰運(yùn)輸,收到后

立即轉(zhuǎn)入液氮或者-80 度冰箱凍存或直接復(fù)蘇;(2)存活細(xì)胞,收到后應(yīng)繼續(xù)生

長,傳代達(dá)到細(xì)胞生長狀態(tài)良好時(shí),再進(jìn)行凍存。具體操作見細(xì)胞培養(yǎng)步驟。

收到細(xì)胞后請拍照,3 天內(nèi)如果發(fā)現(xiàn)污染,請及時(shí)拍照與我們聯(lián)系。

細(xì)胞用途:僅供科研使用。

細(xì)胞接收后的處理:

1 收到細(xì)胞后,請檢查發(fā)貨培養(yǎng)瓶的狀況,若發(fā)現(xiàn)培養(yǎng)瓶破損、有液溢出及細(xì)

胞有污染,請拍照后及時(shí)聯(lián)系我們。

2 在顯微鏡下確認(rèn)細(xì)胞生長狀態(tài)時(shí),最好在低倍鏡(4 5X 物鏡)下進(jìn)行,能

準(zhǔn)確判斷細(xì)胞的傳代密度。看細(xì)胞的形態(tài)請?jiān)?/font> 10X 20×物鏡下,同時(shí)給剛收

到的細(xì)胞拍照,(10×,20×)各 2-3 張以及培養(yǎng)瓶外觀照片一張留存,作為細(xì)

胞需要售后時(shí)提供收到細(xì)胞時(shí)細(xì)胞狀態(tài)的依據(jù)。

3)觀察好細(xì)胞狀態(tài)后,75%酒精消毒瓶壁將 T25 瓶置于 37℃培養(yǎng)箱放置約 2-3h

4 貼壁細(xì)胞:在運(yùn)輸過程中貼壁細(xì)胞會有脫落的現(xiàn)象,如發(fā)現(xiàn)貼壁細(xì)胞有脫落

或者脫落后抱團(tuán)生長,可將 T25 瓶置于 37℃培養(yǎng)箱放置約 2-3h,然后抽出瓶中

的培養(yǎng)基和未貼壁細(xì)胞 1000rpm 離心 5 分鐘,棄去上清重懸后接種到加有按照

說明書細(xì)胞培養(yǎng)條件新配制的完全培養(yǎng)基的原培養(yǎng)瓶中(或新的培養(yǎng)瓶中)。

5 懸浮細(xì)胞:T25 瓶置于 37℃培養(yǎng)箱放置約 2-3h,然后抽出瓶中的培養(yǎng)基和

細(xì)胞 1000rpm 離心 5 分鐘,棄去上清重懸后接種到新的培養(yǎng)瓶中(加入按照說

明書細(xì)胞培養(yǎng)條件新配制的完全培養(yǎng)基)。

6)備注:運(yùn)輸用的培養(yǎng)基(灌液培養(yǎng)基)不能再用來培養(yǎng)細(xì)胞,請換用按照說

明書細(xì)胞培養(yǎng)條件新配制的完全培養(yǎng)基來培養(yǎng)細(xì)胞。 收到細(xì)胞后第一次傳代建

12 傳代

細(xì)胞培養(yǎng)步驟

一.培養(yǎng)基及培養(yǎng)凍存條件準(zhǔn)備:

1)準(zhǔn)備 DMEM(高糖)+10%FBS;雙抗,1%

2)注意:圓形貼壁,傳代時(shí)不可吹打,使其自然脫落。

3)培養(yǎng)條件: 氣相:空氣,95%;二氧化碳,5% 溫度:37 攝氏度,培養(yǎng)箱濕度為 70%-80%

4)凍存液:90%血清,10%DMSO,現(xiàn)用現(xiàn)配。

二.細(xì)胞處理:

1 復(fù)蘇細(xì)胞:將含有 1mL 細(xì)胞懸液的凍存管在 37℃水浴中迅速搖晃解凍,加

4mL 培養(yǎng)基混合均勻。在 1000RPM 條件下離心 4 分鐘,棄去上清液,補(bǔ)

1-2mL 培養(yǎng)基后吹勻。然后將所有細(xì)胞懸液加入培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)過夜(或?qū)?/font>

細(xì)胞懸液加入 10cm 皿中,加入約 8ml 培養(yǎng)基,培養(yǎng)過夜)。第二天換液并檢

查細(xì)胞密度。

2 細(xì)胞傳代:如果細(xì)胞密度達(dá) 80%-90%,即可進(jìn)行傳代培養(yǎng)。

對于貼壁細(xì)胞,傳代可參考以下方法:

1. 棄去培養(yǎng)上清,用不含鈣、鎂離子的 PBS 潤洗細(xì)胞 1-2 次。

2. 2ml 消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)于培養(yǎng)瓶中,置于 37℃培

養(yǎng)箱中消化 1-2 分鐘,然后在顯微鏡下觀察細(xì)胞消化情況,若細(xì)胞大部

分變圓并脫落,迅速拿回操作臺,輕敲幾下培養(yǎng)瓶后加少量培養(yǎng)基終止

消化。

3. 6-8ml/瓶補(bǔ)加培養(yǎng)基,輕輕打勻后吸出,在 1000RPM 條件下離心 4

鐘,棄去上清液,補(bǔ)加 1-2mL 培養(yǎng)液后吹勻。

4. 將細(xì)胞懸液按 12 15 的比例分到新的含 8ml 培養(yǎng)基的新皿中或者

瓶中。

第一次傳代推薦傳代比例為 1:2,以后傳代比例可根據(jù)客戶需要自己決

定。

3)細(xì)胞凍存:待細(xì)胞生長狀態(tài)良好時(shí),可進(jìn)行細(xì)胞凍存。

下面 T25 瓶為類;

1,細(xì)胞凍存時(shí),棄去培養(yǎng)基后,PBS 清洗一遍后加入 1ml 胰酶,細(xì)胞變圓

脫落后,加入 1ml 含血清的培養(yǎng)基終止消化,可使用血球計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)。

24min 1000rpm 離心去掉上清。加 1ml 血清重懸細(xì)胞,根據(jù)細(xì)胞數(shù)量加

入血清和 DMSO,輕輕混勻,DMSO 終濃度為 10%,細(xì)胞密度不低于 1x106/ml,每

支凍存管凍存 1ml 細(xì)胞懸液,注意凍存管做好標(biāo)識。

3,將凍存管置于程序降溫盒中,放入-80 度冰箱,至少 2 個(gè)小時(shí)以后轉(zhuǎn)入

液氮灌儲存。記錄凍存管位置以便下次拿取。

注意事項(xiàng):

1. 收到細(xì)胞后,若發(fā)現(xiàn)干冰已揮發(fā)干凈、凍存管瓶蓋脫落、破損及細(xì)胞有污染,請立

即與我們聯(lián)系。

2. 所有動物細(xì)胞均視為有潛在的生物危害性,必須在二級生物安全臺內(nèi)操作,并請注

意防護(hù),所有廢液及接觸過此細(xì)胞的器皿需要滅菌后方能丟棄。

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